針對第一個問題,羅敏敏實驗室開發(fā)了一種基于AAV的表達系統(tǒng),可以稀疏、高亮地標記特定類型的神經(jīng)元。這一標記系統(tǒng)由兩個AAV載體兩組成:
1)控制子(Controller),由TRE啟動子與Cre依賴的轉(zhuǎn)錄模塊組成。Cre依賴的轉(zhuǎn)錄模塊中包含3’-5’反向的FLPo編碼序列;
2)放大子(Amplifier),由TRE啟動子和FLP依賴的轉(zhuǎn)錄模塊組成。FLP依賴的轉(zhuǎn)錄模塊中包含3’-5’反向的GFP-IRES-tTA編碼序列。
這兩個病毒需混合后進行腦內(nèi)注射。混合病毒侵染神經(jīng)元后,若神經(jīng)元內(nèi)無Cre表達,則標記不發(fā)生。當病毒感染Cre陽性神經(jīng)元后,控制子中的Cre依賴的轉(zhuǎn)錄元件會被翻轉(zhuǎn)。由于此時神經(jīng)元內(nèi)沒有tTA表達,TRE啟動子轉(zhuǎn)錄活性低。在大多數(shù)被病毒侵染的Cre陽性神經(jīng)元中FLPo表達量極低,無法觸發(fā)放大子中FLP依賴的轉(zhuǎn)錄模塊的翻轉(zhuǎn)。隨機的,在某些Cre陽性神經(jīng)元中,F(xiàn)LPo表達量達到一定的水平,觸發(fā)放大子中FLP依賴的轉(zhuǎn)錄模塊的翻轉(zhuǎn)。
由于放大子同樣使用TRE啟動子,轉(zhuǎn)錄活性低,只有少量的GFP和tTA表達。此時,在極少量細胞內(nèi)tTA的表達量達到一定水平,足以結(jié)合TRE啟動子并啟動其后基因的轉(zhuǎn)錄,正反饋回路被觸發(fā):細胞表達更多的FLPo對剩余的放大子組件進行翻轉(zhuǎn),并使更多的GFP和tTA被表達出來,標記強度得到增強
。
該系統(tǒng)的設(shè)計有兩個優(yōu)點:
1)由于標記的觸發(fā)依賴于Cre,通過將該稀疏標記系統(tǒng)與Cre轉(zhuǎn)基因小鼠聯(lián)用,能夠?qū)崿F(xiàn)細胞類型特異性的稀疏標記;
2)通過調(diào)整控制子和放大子的混合比例,能夠控制標記的稀疏程度。
基于這一標記系統(tǒng),羅敏敏課題組與華中科技大學國家光電研究中心fMOST課題組合作,建立了“稀疏標記-樣本包埋-fMOST成像-神經(jīng)元重構(gòu)-數(shù)據(jù)校準-量化分析”的流水線,實現(xiàn)了穩(wěn)定高通量的全腦成像和圖像分析。借助這一流水線,研究人員在DAT-Cre小鼠中重構(gòu)了15個中腦多巴胺神經(jīng)元的完整形態(tài)。
通過單細胞形態(tài)學分析,研究人員能夠?qū)⒅貥?gòu)的多巴胺神經(jīng)元分為兩類:一類多巴胺神經(jīng)元只有單個投射目標,軸突在終點處會形成密集的末端樹狀分支;另一類投射軸突分布比較廣泛,會有多個旁分支投向不同目標,少有末端樹狀分支。
研究人員利用不同血清型的AAV病毒,進一步拓展了稀疏標記系統(tǒng),實現(xiàn)了投射特異性的神經(jīng)元稀疏標記。利用此方法并結(jié)合fMOST成像,研究人員成功對皮層-紋狀體投射神經(jīng)元進行特異性標記和完整重構(gòu)。
組織透明化是近期成像領(lǐng)域?qū)矣型黄频募夹g(shù)。研究人員將稀疏標記系統(tǒng)與組織透明結(jié)合,在PV-Cre和SOM-ires-Cre小鼠中特異性的標記了兩類中間神經(jīng)元,制成腦片后用uDISCO方法進行透明化處理。隨后在共聚焦顯微鏡下成像,并對對神經(jīng)元進行了重構(gòu)。通過此方法,研究人員實現(xiàn)了中間神經(jīng)元的快速重構(gòu),并且可以高效地對神經(jīng)元樹突的分支特征進行量化分析。
該稀疏標記系統(tǒng)的另一大優(yōu)點是可拓展性高。最初版本的稀疏標記系統(tǒng)中,研究人員利用了Cre和FLP這一對重組酶。通過引入新的重組酶,理論上可以構(gòu)建與Cre/FLP版本相正交的新版本稀疏標記系統(tǒng),以實現(xiàn)在同一樣本內(nèi)對不同種類神經(jīng)元的多色標記。為了驗證此策略,研究人員引入了DreO和vCre這一對新的重組酶,構(gòu)建了DreO/vCre版本的稀疏標記系統(tǒng)。利用Cre/FLP和DreO/vCre兩個版本的稀疏標記系統(tǒng),研究人員成功實現(xiàn)在同一鼠腦內(nèi)對兩群神經(jīng)元進行雙色稀疏標記。
相比于現(xiàn)有的稀疏標記方法,羅敏敏課題組開發(fā)的這一稀疏標記策略具有易使用、易拓展、效率高的特點。除了文章中展示的分子特異性或投射特異性標記,理論上該系統(tǒng)也可以與光遺傳學分子、分子探針、CRISPR/Cas9元件等聯(lián)用,用于單細胞水平功能性研究。這一技術(shù)的開發(fā)將有助于將腦連接譜研究推向單細胞精度,并有希望幫助研究人員在單細胞精度下對正常及病理狀態(tài)的神經(jīng)元進行研究。
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